Сноска. Приложение 3 – в редакции приказа Министра здравоохранения РК от 06.01.2026 № 2 (вводится в действие по истечении десяти календарных дней после дня его первого официального опубликования).
Бактериологический контроль проводят по эпидемиологическим показаниям, а также в плановом порядке с целью оценки качества процессов стерилизации и дезинфекции.
При проведении текущей дезинфекции бактериологический контроль осуществляется: в родильных залах, операционном блоке, процедурных, перевязочных, палатах интенсивной терапии, молочной комнате, в палатах послеродового отделения, детских палатах.
При обследовании родильных домов по эпидемическим показаниям смывы отбирают как с чистых, так и бывших в употреблении предметов.
Учитывая, что ИСМП в акушерских стационарах вызываются различными микроорганизмами, при обследовании по эпидемическим показаниям, в зависимости от конкретного случая, бактериологические исследования проводят на бактерии, способные вызвать внутрибольничные инфекции, в том числе стрептококки, псевдомонады, энтеробактерии.
Определение чувствительности выделенных микроорганизмов к антибиотикам проводят по особому порядку (выборочно – при повторных случаях выявления микроорганизмов) и по эпидемическим показаниям.
Перечень объектов исследования расширяется исходя из условий эпидемиологического обследования:
К стандартным объектам исследования относятся:
1) воздушная среда;
2) стерильный медицинский инструментарий;
3) руки после проведения хирургической антисептики и стерильная одежда медицинского персонала, операционное поле;
4) хирургический шовный материал;
5) предметы окружающей среды.
Бактериологическое исследование микробной обсемененности воздуха медицинской организации проводится по эпидемиологическим показаниям.
Бактериологические исследования воздуха предусматривают определение общего количества микроорганизмов в 1 кубическом метре (далее – куб. м) воздуха, количество плесневых и дрожжевых грибов в 1 куб.м воздуха, количество колоний стафилококк ауреус в 1 куб. м. воздуха.
Особое внимание при этом следует обратить на состояние воздушной среды над операционным полем (обильное появление микроорганизмов в связи с работой хирурга, операционной сестры).
Пробы воздуха отбирают аспирационным методом, при отсутствии пробоотборников допускается производить исследование микрофлоры воздуха закрытых помещений методом седиментации (оседания) микрофлоры на чашку с мясо-пептонным агаром для определения общей обсемененности воздуха в течение 10 минут; для определения стафилококк ауреус – 20 минут.
В смывах с поверхности оборудования централизованных стерилизационных отделений исключается наличие санитарно-показательных и патогенных микроорганизмов.
Забор проб на стерильность осуществляется в стерильные емкости с соблюдением строжайших правил асептики непосредственно перед операцией. Забор проб на стерильность проводится в плановом порядке для контроля качества стерилизации.
Объектами для контроля стерильности являются:
шовный материал, подготовленный для оперативных вмешательств;
медицинский инструментарий, операционное поле, руки хирурга после проведения обработки;
перевязочный материал, белье, салфетки для осушения рук.
Для контроля стерильности используют питательные среды: тиогликолевый бульон, бульон Сабуро. Одновременный посев на две указанные среды обязателен.
При посеве изделия или его части непосредственно в питательную среду, количество среды в емкости наливается до полного погружения пробы. Посевы в тиогликолевый бульон выдерживают в термостате при температуре 37 ⁰С, в среду Сабуро – при температуре 20-22 ⁰С. Посевы инкубируют в термостате в течение 8 календарных дней.
Исследование материала на стерильность (шовный материал, инструментарий, перевязочный материал) проводится на экспресс - анализаторах. Сроки выращивания и учет результатов проводится согласно прилагаемой к аппарату инструкции
Смывы с кожи операционного поля и рук хирургов проводят стерильными салфетками размером 5 на 5 сантиметров или тампонами, смоченными стерильным физиологическим раствором.
Тщательно протирают ладони, околоногтевые и межпальцевые пространства обеих рук. После забора проб тампон помещают в пробирку со стерильным физиологическим раствором, который засевают по 0,5 мл в две пробирки с 5,0 мл тиогликолевой среды. Посевы инкубируют при температуре 37 ⁰С в течение 48 часов.
Учет результатов: обработка кожи операционного поля и рук хирургов эффективна при отсутствии роста микроорганизмов в питательной среде.
Исследование микробной обсемененности предметов окружающей среды проводят исключительно по эпидемиологическим показаниям. Объекты контроля определяются исходя из условий и потребностей эпидемиологического обследования врачом эпидемиологом и/или членами комиссии инфекционного контроля.
Бактериологическое исследование микробной обсемененности предметов окружающей среды в организациях здравоохранения предусматривает выявление микроорганизмов семейства кишечных, стафилококков и синегнойной палочки с чистых и бывших в употреблении предметов.
Объекты контроля:
польстер, кровать, лоток, подготовленный для приема новорожденных;
баллон с аппарата для отсоса слизи, шланг вакуум – экстрактора;
набор первичной и вторичной обработки новорожденного;
фартук акушеров, аппарат искусственной вентиляции легких, насадка и шланг кислородной подводки;
пеленальный стол, весы;
глазные палочки, пипетки;
поверхность инструментального стола, полки медицинских шкафов для хранения медикаментов и инструментария, градусники, внутренняя поверхность холодильника;
руки хирургов, анестезиологов, акушер-гинекологов, неонатологов, акушерок, процедурных, детских медицинских сестер;
посуда для розлива и приготовления смесей, ватные шарики и марлевые салфетки;
операционный стол, стол анестезиолога, каталки для транспортировки оперированных больных;
ветошь для проведения уборки.
Отбор проб с поверхности осуществляется методом смыва. Взятие смывов проводится стерильным ватным тампоном на палочках вмонтированных в пробки пробирок с 5,0 мл стерильной 1 % пептонной воды. Тампон увлажняют, делают смыв с объекта и помещают в ту же пробирку. При контроле мелких предметов смывы отбирают со всей их поверхности. При контроле больших поверхностей смывы проводят с площади не менее 100 квадратных сантиметров, тщательно протирая поверхность. Необходимо обращать внимание на места труднодоступные для мытья и дезинфекции.
Исследование растворов для питья проводят с целью установления бактериальной обсемененности, титра бактерий группы кишечных палочек, стафилококков.
Для определения титра бактерий группы кишечных палочек пробы засевают на среду Кесслера в следующих объемах: 10 мл, 1 мл и по 1 мл из разведений 1:10 и 1:100. Посевы инкубируют при температуре 37 ⁰С в течение 18-24 часов, после чего проводят высев на среду Эндо. При росте характерных колоний для бактерий группы кишечных палочек осуществляют постановку второй бродильной пробы на глюкозу с поплавком. Среду выдерживают 24 часа при температуре 37 ⁰С. При выявлении бактерий группы кишечной палочки проводят идентификацию выделенных культур.
Для определения общего микробного числа растворы засевают параллельно на две чашки Петри по 1 мл, при исследовании грудного молока засевают по 1 мл из разведения 1:10 на две чашки. Посев проводят глубинным методом, используя среду мясо-пептонного агара. После инкубации посевов при температуре 30 ⁰С в течение 48 часов производят подсчет выросших колоний.
Исследование отделяемого верхних дыхательных путей проводится при необходимости с диагностической целью.
Обязательному бактериологическому исследованию подвергают слизь верхних отделов носа; исследование слизи из зева проводят по показаниям, прежде всего при наличии в нем воспалительных процессов. Забор материала производят стерильным ватным тампоном из обеих половин носа, другим тампоном из зева с поверхности миндалин. Материал из зева собирают натощак или не ранее, чем 2-3 часа после приема пищи.
Посев исследуемого материала на питательные среды производят не позднее, чем через 2 часа после его забора.
Для первичного посева используют одну из питательных сред: желточно- солевой, молочно-солевой, молочно – желточно - солевой агар.
Посев проводят одним из способов:
непосредственно тампоном, которым забирали материал, при этом его многократно поворачивают для переноса на питательную среду максимального количества взятого материала;
взятый тампоном материал в лаборатории помещают в пробирку с 5 мл стерильного физиологического раствора. Тампон ополаскивают в жидкости встряхиванием в пробирке в течение 10 минут. Жидкость многократно перемешивают пипеткой и 0,1мл наносят на одну из выше указанных питательных сред, тщательно растирают шпателем.
Обсемененность, выражающаяся показателем 1000 и более колониеобразующих единиц (далее – КОЕ), взятых на тампон, является показателем высокой обсемененности возбудителем, при которой легко происходит его выделение во внешнюю среду даже при спокойном дыхании.
Массивность обсеменения верхних дыхательных путей стафилококками при прямом посеве материала тампоном оценивается в крестах:
++++ сливной рост колоний на чашках; *
+++ сплошной рост изолированных колоний; *
++ значительный рост (до 100 колоний);
+ единичные колонии (до 10-25).
Примечание: * - сливной и сплошной рост соответствуют как правило, массивности обсеменения 1000 КОЕ, снятых на тампон.
Для определения массивности обсеменения верхних дыхательных путей стафилококками при посеве 0,1 мл смывной жидкости подсчитывают число выросших на чашке однородных колоний, идентичных по морфологии и пигменту, затем подсчитывают количество КОЕ, снятых на тампон.
Пример расчета: на чашке выросло 15 колоний, значит в 0,1 мл содержалось 15 КОЕ, во всем объеме смыва будет 15 х 10 х 5 = 750.
При обсемененности ++++ проходят санацию.
Если Вы обнаружили на странице ошибку, выделите мышью слово или фразу и нажмите сочетание клавиш Ctrl+Enter
© 2012. РГП на ПХВ «Институт законодательства и правовой информации Республики Казахстан» Министерства юстиции Республики Казахстан
поиск по странице
Введите строку для поиска Совет: в браузере есть встроенный поиск по странице, он работает быстрее. Вызывается чаще всего клавишами ctrl-F.